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細胞游離DNA(cfDNA)檢測整體研究方案

CfDNA testing protocol

細胞游離DNA(cell-free DNA,cfDNA)是指在生物體的體液中(如血漿、尿液、腦脊液等)自由存在的、非細胞內(nèi)的DNA片段。這些DNA片段通常來源于細胞凋亡(程序性死亡)或壞死(細胞損傷或死亡后釋放),可以被釋放到循環(huán)系統(tǒng)中,并在體液中被檢測到。cfDNA研究和應用是精準醫(yī)療和液體活檢領域的重要方向之一。

cfDNA特點:來源多樣、片段短小、半衰期短、非侵入性檢測

cfDNA應用領域:腫瘤學、產(chǎn)前診斷、移植醫(yī)學、移植性疾病等

cfDNA檢測研究方案

1. 研究目標

  • 確定cfDNA在特定疾?。ㄈ缒[瘤學、產(chǎn)前診斷等)早期篩查和診斷中的有效性和準確性。
  • 識別和驗證疾病特異性的cfDNA甲基化和羥甲基化標記。
  • 評估cfDNA組蛋白修飾在疾病早期診斷中的作用。

2. 研究設計

  • 隊列選擇:選擇特定疾病高風險人群和健康對照組,確保樣本的代表性和多樣性。
  • 樣本收集:收集血漿、尿液、腦脊液等樣本,并確保樣本的質量和存儲條件符合要求。

3. 檢測技術

  • cfDNA甲基化檢測:使用cfDNA-RBS、cfWGBS、cfMeDIP-seq等技術進行甲基化模式分析。
  • cfDNA羥甲基化檢測:采用ACE-seqcfhMeDIP-seq技術進行羥甲基化水平分析。
  • cfDNA組蛋白修飾檢測:利用cfChIP-seq技術研究組蛋白修飾水平。
  • cfDNA基因突變檢測:通過WGSWES技術檢測cfDNA基因組變異。

4. 數(shù)據(jù)分析

  • 生物信息學分析:對測序數(shù)據(jù)進行質量控制、比對、變異檢測和甲基化水平分析。
  • 統(tǒng)計分析:使用機器學習模型識別疾病特異性標記,并評估其診斷效能。

5. 驗證和臨床應用

  • 驗證研究:在獨立隊列中驗證發(fā)現(xiàn)的生物標志物。
  • 臨床應用:與臨床數(shù)據(jù)結合,評估cfDNA檢測在實際臨床診斷中的應用價值。

cfDNA檢測樣本選擇和送樣要求

樣本選擇

·     血漿樣本:血漿能避免所含血細胞裂解引起的DNA污染,是cfDNA檢測的優(yōu)先選擇。

·     腦脊液樣本:通常作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病研究的樣本選擇。

·     尿液樣本:常用于泌尿系統(tǒng)癌癥如膀胱癌、腎癌等腫瘤標志物研究及移植排異監(jiān)測等cfDNA研究。


血漿樣本要求

·     樣本采集:靜脈抽血5-10ml,收集到EDTA抗凝血管中,上下顛倒抗凝采血管,輕輕混勻,全血2-8℃保存不超過4h;如用Streck采血管收集全血,則5-8℃保存不超過72h。

·     分離血漿:采血后建議馬上分離血漿,提取cfDNA,-20℃保存;如不能馬上提取,常規(guī)采血管采血后必須4h內(nèi)(最好30min-1h內(nèi))完成血漿分離,-80℃保存。

·     樣本運輸:大體積干冰運輸。


cfDNA研究案例
 (1)ctDNA全基因組亞硫酸鹽測序分析,用于癌癥檢測和分子分類
此研究納入三組乳腺癌(BC)患者(BC組n=123;健康對照組n=40),利用ctDNA-WGBS技術檢測從200μL血漿中獲得的微量ctDNA(輸入量約1ng)進行測序分析。研究結果發(fā)現(xiàn),在多中心患者隊列中,在早期和晚期BC階段中對于15個ctDNA甲基化標志物的診斷特征表現(xiàn)出高準確性。同時可以在不同的癌癥類型(包括肝細胞癌和肺癌)中可以很好區(qū)分雌激素受體狀態(tài)的ctDNA甲基化特征。
 
圖:ctDNA甲基化可以作為乳腺癌亞型分類和預測ER狀態(tài)的潛在生物標志物[3]

  (2)MeDIP-seq結合機器學習方法,為多癌種生物標志物檢測提供新思路。
此研究通過結合cfMeDIP-seq技術和機器學習,分析了215例樣本的cfDNA甲基化組,包括患有肝癌或腦癌的個體樣本(實驗組)以及無癌癥個體樣本(對照組)。利用DMRs、DhMRs或DMRs+DhMRs訓練機器學習模型,結果發(fā)現(xiàn)DMRs+DhMRs聯(lián)合模型在區(qū)分對照組、肝癌和腦癌方面表現(xiàn)出更優(yōu)性能,研究支持同時利用DMRs和DhMRs進行多癌種檢測的潛力。
 
圖:用于分析血漿cfDNA甲基化的單鏈cfDNA甲基化DNA免疫沉淀測序方法[4]

(3)ACE-seq無需亞硫酸鹽轉化精準區(qū)分甲基化和羥甲基化標記
此研究建立一種利用DNA脫氨酶(APOBEC3A)實現(xiàn)的非破壞性的、低起始DNA量的鑒定5hmC技術(ACE-seq)。與傳統(tǒng)亞硫酸鹽測序(BS-Seq)不同,ACE-seq不依賴于亞硫酸鹽處理,而是通過酶促脫氨反應來區(qū)分未修飾的胞嘧啶(C)和5-甲基胞嘧啶(5mC),同時保護5hmC不被轉化為尿嘧啶。這種方法允許對cfDNA中的5hmC進行精確的定位和定量分析。
 
圖:幾類基因組元件的 5hmC(藍色)和 5mC(紅色)的修飾水平[2]

  (4)cfhMeDIP-seq對5-羥甲基胞嘧啶(5hmC)特征進行檢測以預測早期胰腺癌
此研究利用cfDNA hMeDIP-seq對胰腺導管腺癌(PDAC)隊列(n=64)與非癌癥隊列(n=243)的5hmC變化進行比較分析。在數(shù)千個基因中鑒定差異性羥甲基化,結果表明胰腺發(fā)育或功能相關基因和癌癥發(fā)病機制相關基因差異最為顯著。在PDAC隊列的cfDNA羥甲基化組中,與KRAS激活和TP53失活在PDAC腫瘤中常見基因調控失調相關的基因表現(xiàn)出差異性富集,表明5hmC變化在早期疾病階段能實現(xiàn)PDAC分類。
 
圖:與非癌癥患者cfDNA相比,PDAC cfDNA中的5hmC占位差異分析[5]

  (5)cfChIP-seq利用cfDNA片段分析組蛋白修飾,揭示H3K27ac水平與cfDNA片段大小有關
此研究利用cfChIP-seq檢測技術從18個健康對照樣本中獲得H3K27ac信號,并結合配對樣本分析循環(huán)核小體的cfDNA片段大小模式和H3K27ac信號之間的相關性。隨后構建線性回歸模型,可根據(jù)cfDNA片段大小模式推斷血漿中H3K27ac水平(H3K27ac相關信號)。分析發(fā)現(xiàn)H3K27ac相關信號與cfChIP-seq測定的H3K27ac相關信號一致。
 
圖:cfChIP-seq揭示H3K27ac水平與cfDNA片段大小之間的關系[7]

(6) cfDNA低覆蓋度WGS揭示腫瘤患者的全基因組突變特征
此研究對215名患者和227名健康人群的血漿進行全基因組測序(WGS),鑒定出病理性和生理性突變特征。
 
圖:多種癌癥類型的血漿基因突變特征檢測[6]

參考文獻:
① Shen SY, Burgener JM, Bratman SV, De Carvalho DD. Preparation of cfMeDIP-seq libraries for methylome profiling of plasma cell-free DNA. Nat Protoc. 2019 Oct;14(10):2749-2780. pii: 10.1038/s41596-019-0202-2. doi: 10.1038/s41596-019-0202-2. PubMed PMID: 31471598.
② Schutsky EK, et al.Nondestructive, base-resolution sequencing of 5-hydroxymethylcytosine using a DNA deaminase. Nat Biotechnol. 2018 Oct 8. pii: nbt.4204. doi: 10.1038/nbt.4204. PubMed PMID: 30295673.
③ Gao Y, et al. Whole-genome bisulfite sequencing analysis of circulating tumour DNA for the detection and molecular classification of cancer. Clin Transl Med. 2022 Aug;12(8):e1014. doi: 10.1002/ctm2.1014. PubMed PMID: 35998020.
④ Hua X, et al. Tumor detection by analysis of both symmetric- and hemi-methylation of plasma cell-free DNA. Nat Commun. 2024 Jul 20;15(1):6113. pii: 10.1038/s41467-024-50471-1. doi: 10.1038/s41467-024-50471-1. PubMed PMID: 39030196.
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⑥ Wan JCM, et al. Genome-wide mutational signatures in low-coverage whole genome sequencing of cell-free DNA. Nat Commun. 2022 Aug 23;13(1):4953. pii: 10.1038/s41467-022-32598-1. doi: 10.1038/s41467-022-32598-1. PubMed PMID: 35999207.
⑦ Bai J, et al. Histone modifications of circulating nucleosomes are associated with changes in cell-free DNA fragmentation patterns. Proc Natl Acad Sci U S A. 2024 Oct 15;121(42):e2404058121. doi: 10.1073/pnas.2404058121. PubMed PMID: 39382996.